大鼠随机分为空白对照组(5只)、模型对照组(10只)和电针治疗组(10只)。大鼠分组放置于动式吸入染毒柜内，其中空白对照组大鼠仅给予新鲜空气，不作任何操作;另外2组大鼠分别暴露于含质量浓度为5000mg/m3的1-BP空气中，每天连续吸入8h，每周连续染毒5d后休息2d，连续4周染毒。当大鼠出现后肢肌力下降，且神经电生理检查发现坐骨神经运动神经传导速度(Motornerveconductionvelocity，MCV)和感觉神经传导速度(Sensenerveconductionvelocity，SCV)降低时，则认为造模成功。染毒期间，每天观察大鼠的外观、精神状态、进食和活动情况，并于染毒前(第0周)、染毒结束(第4周)、电针治疗第2个疗程结束(第6周)和电针治疗第4个疗程结束后(第8周)称量大鼠体质量。
神经传导速度检测：
坐骨神经损伤模型的制备：
以剂量为30mg/kg、浓度为3%的戊巴比妥钠麻醉大鼠，俯卧固定、脱毛、消毒，右下肢股后部行纵切口、分离肌层，无菌显露并游离坐骨神经，于梨状肌下缘1cm处用特制血管钳钳夹坐骨神经，持续30s，后逐层关闭切口。术后待大鼠清醒后，分笼饲养，勤换垫料以防足底发生溃疡。
一般情况观察：
术后每日观察大鼠饮水、进食情况、精神状态、活动状况、皮肤伤口的愈合情况、手术侧肢体形态及完整性。术后8周，麻醉后处死大鼠，取材时观察手术侧神经断端吻合情况。坐骨神经压碎损伤造模成功后坐骨神经压碎损伤后，仅神经外膜连接，其他结构连续性中断，损伤处表现为透明状。
坐骨神经功能指数（SFI）测定：
坐骨神经功能指数是评估运动功能恢复状况的一种重要指标，数值在0至-100，神经功能正常时坐骨神经功能指数在0附近，而完全的神经功能障碍则指数在-100附近。SFI作为评估周围神经损伤模型中功能恢复的最重要的指标之一，也是目前采用最多的方法，对于评价大鼠坐骨神经功能恢复有重要意义。目前，SFI已成为测量大鼠坐骨神损伤模型神经功能恢复的金标准。
文献引用
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