不应在细菌污染和感染风险高的部位采血，例如由于局部组织损伤、局部皮肤感染、腹泻、尿失禁等。
1.3设备
一个预注肝素的动脉血气针筒，附有23–25G，英寸的针头。
70％医用消毒酒精。
棉球或纱布。
25mm宽的自粘绷带（例如Vetrap）。
1.4动物准备和保定
动脉血液采样是在动物意识清醒时进行的。
如果可能，应避免使用镇静剂，因为它会影响检测结果。
动物的保定姿势应便于血液收集。
1.5部位
最常用的是足背动脉，但在猫和小型犬中，有时使用股动脉会更容易采血。
足背动脉
将动物置于侧卧位，猫和小型犬在桌子上进行，大型犬在地板上进行，待采样的腿要最贴近桌子或地板。
让一位助手用一只手保定动物的头部，用另一只手保定动物的上肢。
在跗关节的近端，第二和第三跖骨之间的背侧能够触及动脉脉搏。
股动脉
将动物置于侧卧位，猫和小型犬在桌子上进行，大型犬在地板上进行，待采样的腿应最贴近桌子或地板。
让一位助手保定动物，将上肢外展，以便触及股动脉。
在靠近膝关节，腹股沟腹侧区域，大腿近中的部位能够触及股动脉脉搏。
1.6操作步骤
1.拉伸动脉上的皮肤。
2.触摸动脉。
3.轻轻修剪掉动脉上皮肤毛发，然后用医用酒精喷洒或轻轻擦拭。过度擦洗/擦拭皮肤可能导致动脉痉挛，所以应避免该操作。
4.用一只手的两个指尖轻轻压住动脉，感知动脉脉搏。
5.用另一只手将带针筒的针头朝向动脉，保持大约30度的角度。针头斜面朝上。
6.快速稳固地将针头刺入动脉。
7.当针头进入到动脉时，将看到针头的针芯内出现血液。
8.收集大约1ml的血液。
9.从动脉拔出针头。
10.在取出针头时，对动脉直压5分钟，然后覆以棉球或纱布，并用自粘绷带固定。
11.将针筒立起并轻敲，以使气泡上浮。排出针筒中所有空气。
12.用密封盖封闭血样，以防血样暴露于空气。预注肝素化血气针筒配有橡胶塞或塑料帽。
13.血样必须尽快分析，最好在5分钟内进行。
犬猫呼吸室内空气的大致正常动脉血气值
1.7潜在并发症
只要对动脉进行直压，很少会出现显著的出血。
一些动物会出现瘀伤和形成小血肿，但好的抽血技巧和充分动脉直压可以将这些问题最小化。
动脉血栓和静脉炎不常见，但如果反复尝试从动脉采集血液，则发生概率会增加。
猫不同位置的采血技术参考
2、静脉血液采样
2.1适应症/用途
为临床病理学检测或细菌培养获取静脉血样。
2.2禁忌症
凝血障碍
不应在细菌污染和感染风险高的部位进行采样，例如由于局部组织损伤、局部皮肤感染、腹泻、尿失禁等。
2.3设备
皮下注射针：
-猫：23–21G；英寸
-狗：21G；或1英寸
2–10ml注射器
70％医用消毒酒精
4％氯己定（洗必泰）或10％聚维酮碘
棉球或纱布
25ml宽的自粘绷带（例如Vetrap）
适当的血液容器和/或三个血液培养瓶（预热至37°C）
无菌手套
2.4动物准备和保定
静脉血液采样是在动物意识清醒下进行的，一些暴躁的动物可能需要轻度镇静。
颈静脉采样时，可以用一条大毛巾包裹着猫，以约束它们的四肢；对于外周静脉采样，可以将目标肢体露在毛巾之外。
动物的保定姿势应便于血液的采集。
目标静脉上方的毛发剔除面积应更大一些，以识别静脉及其行走方向。
使用棉球或纱布，用4％氯己定或10％聚维酮碘清洁静脉上方的皮肤，然后喷洒或擦拭医用酒精。
在进行细菌培养时，注意不要触碰针头插入的部位。采血过程应戴手套。
2.5部位
通常首选颈静脉，因为颈静脉足够大，可以在不需要过多负压的情况下快速抽出血样。这样可以最大程度减小溶血和血样内血凝块的形成。如果颈静脉不可用——动物对颈静脉采血反感，或者计划进行的手术可能会受到颈静脉血肿或出血影响（例如颈静脉导管置入或甲状腺手术），则可以头静脉和侧隐静脉。
颈静脉
将动物置于坐姿，猫和小型犬在桌子上进行，大型犬在地板上进行。
一位助手站在动物左侧。
助手将右臂横跨动物的背部并环绕至动物前部，以控制前肢。
助手的左臂通过抓住动物的口鼻并将鼻孔指向天花板来伸展动物的颈部。
对于因恐惧而表现出攻击性的猫，或那些特别好动的猫，可以将其置于侧卧位或仰卧位，用手和身体控制四肢，或者用毛巾包裹住猫。
用一只手在颈静脉入口处轻轻施加压力，将静脉抬起到颈静脉沟的水平。
头静脉
将动物置于坐姿或胸卧位，猫和小型犬在桌子上进行，大型犬在地板上进行。
一位助手站在动物的左侧。
助手的左手伸入动物的颈部并将头部转至远离采血管的方向。
助手的右臂用于伸展动物的右前肢。
抱住动物的助手通过将大拇指环绕在前肢肘部以下，并轻轻旋转手腕，将静脉引导到前肢的颅侧。
隐静脉
将动物置于侧卧位，猫和小型犬在桌子上进行，大型犬在地板上进行。
让一位助手用一只手保定动物头部。
助手另一只手拉伸上方后肢同时拉伸身体。
负责保定动物的助手通过环绕上方后肢的尾部，同时在膝关节水平施加压力，将静脉抬高。
2.6操作步骤
用于生化检验或血液学
1.将连接针筒的针头斜面朝上，以约30度的角度插入静脉中。
2.用针头顺着静脉的方向前进。
3.通过轻轻向针筒柱塞施加负压来抽取血液。避免对针筒施加过度负压，避免静脉塌陷。如果针头内没有血液，重新定向针头轻轻地再次进入静脉，但避免大幅度的摆动针头。如有必要，将针头取出，然后用新的针头重新开始。
4.释放静脉上的压力。
5.拔出针头。如果是从颈静脉采样，轻压静脉30–60秒。如果用头静脉或侧隐静脉采血，应使用纱布或棉球轻轻包扎，并用自粘绷带固定30–60分钟。
6.将血样放到合适的采样管中。
-血液应最后放入含有EDTA抗凝剂的试管中。
7.轻轻颠倒试管几次，确保血样和添加剂充分混匀。不要摇晃试管，这样可能会导致溶血。
用于细菌培养
1-5.按照上述1至5步骤取一个5–10ml的血样（参见所需体积的培养瓶）。由于需要相对较大的血量，应使用颈静脉采血。
6.在针筒上安装新的针头。
7.用医用酒精擦拭培养瓶的橡胶塞并晾干。
8.将所需量的血液加入预热的培养瓶中。
9.采集三份血液样本，样本采集间隔至少为1小时，或者在急性败血症患病动物中，采集间隔可以改为30分钟。
10.培养瓶应尽快送到实验室进行检验。虽然不是理想情况，但隔夜递送的样本依然可能得到有意义的结果。
2.7潜在并发症
这些情况非常罕见，可能包括：
-轻微出血
-皮下血肿形成
-静脉炎
血清或血浆样品的变化
参考文献略
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