在治疗羊病时，合理用药，可促使疾病早期痊愈，否则会拖延病程，浪费药品，甚或导致死亡。用药中存在问题较多，现提出几个常见的问题，以引起重视。
1.羊用药剂量比例
羊不同年龄用药量比例见表2.13。羊不同用药途径用药量比例见表2.14。
表2.13羊不同年龄用药量比例
表2.14羊不同用药途径与用药量比例
2.输液问题
在羊病治疗中，常常涉及补液问题。在某一具体疾病中，究竟怎样确定补液量，这是兽医人员经常接触到的问题。补液合理，可使病羊迅速恢复健康；补液若不合理，往往会加速死亡或发生医疗事故。据平时所见，兽医人员给病羊输液时，少则500毫升，多则5000毫升。无根据的随意补液，会造成人力、物力浪费，应该引起足够的注意。
（１）体液：机体内存在的液体称为体液。体液约占成年羊体重的70%，其中细胞内液占体重的45%，细胞外液（包括血浆，胸、腹腔液，细胞间液等）占体重的25%。体液中含有阳离子和阴离子，细胞外液中阳离子以Na+和Mg2+占绝大多数，阴离子以Cl-和HCO3-为主要成分；细胞内液中阳离子以K+和Mg2+占绝大部分，阴离子以HPO4-和蛋白质为主。
体液中这些电解质的主要功能有：一是维持渗透压与水平衡；二是维持神经肌肉的兴奋性。液体或任何离子的丢失，都会引起羊只的异常而产生一系列症状。
（２）脱水：各种原因引起体液的丢失称为脱水。脱水时，电解质紊乱，根据水、电解质紊乱情况，可将脱水分为三种类型。
1）等渗性脱水：水与钠同时减少，病羊的血浆为等渗液，故称为等渗性脱水。常见于羔羊痢疾，胃肠炎等。在腹泻时，丢失大量的细胞外液，但由于机体本身调节，故细胞内外液仍然维持等渗，因此在细胞内外液之间不发生水的转移，结果循环血量和细胞间液减少，细胞内液量正常。病羊表现：皮肤弹性降低；血压下降甚至发生休克；循环血量减少，血液相对浓缩；肾血流量减少，肾小球滤过率降低，同时，醛固酮和抗利尿激素增多，引起肾小管对Na+等吸收作用加强，导致尿量减少。
2）高渗性脱水：水的丢失过多，此时血浆渗透压增大，故称为高渗性脱水。见于病羊不吃不喝，使水源断绝时；另外如出汗过多（汗液为低渗液）、大量应用脱水剂（甘露醇注射液）消化液大量丢失等。由于细胞外液渗透压增高，细胞内液渗透压相对较低，则细胞内水向细胞外液转移，因而循环血量下降，而细胞内则严重脱水。表现为口腔干燥、口渴，皮肤弹性减退，尿少而比重增高，大脑细胞脱水时出现昏迷症状。
3）低渗性脱水：体液中钠的丢失过多，使血浆渗透压过低，称为低渗性脱水。一般是在等渗或高渗性脱水时，大量补水而引起，此时细胞外液渗透压降低，细胞水肿，循环血量特别是细胞间液明显减少。表现：尿液初多后少，无力，厌食、眼窝下陷，血压下降，脑细胞水肿时昏睡，昏迷或休克。
在急性肾功能衰竭、水排出减少的情况下，输入低渗液体过多而引起水中毒。
（3）估计补液量的方法：上述各种脱水，以等渗性脱水多见，在兽医临床中，目前尚无可靠的计算脱水量的公式采用，我们暂且依据红细胞压积容量估计脱水量：
用温氏(Wintrobe)比容管测定压紧的红细胞容量的百分数，即为红细胞压积容量（PCV），简称“比容”。测定方法如下：
用草酸钾与草酸铵合剂0.1毫升或10%EDTA-2Na0.1毫升，装入小瓶，在50℃下烘干。此量可使5毫升血液不凝固。选这两种抗凝剂之一，采血5毫升，混匀。
用长针头吸满抗凝血，插入温氏管底部，然后轻捏胶皮乳头，自下而上挤入血液至刻度10处，切不可有气泡。
装入离心机，以3000转/分的速度离心30分钟，此时血液分为三层：上层为血浆，下层为红细胞，红细胞层之上有一薄层灰白色的白细胞层。为提高准确性，一般在读取红细胞数后，再离心沉淀5分钟，如与第一次读数相同，说明红细胞已压紧，记录读数。
将红细胞读数乘10，即为红细胞比容之百分数。例如读取的红细胞层为3.5，则结果红细胞比容为35%；如果所用的离心机为倾斜式的，则红细胞层为一斜面，此时可读取斜面1/2处所对应的刻度。
PCV以35.5%计算，则血浆占64.5%。脱水时，血浆中的液体被丢失，红细胞相对增多，血液变稠，比容升高。在临床上应用于估计脱水类型，而决定补液量。
当PVC增加为40%时为轻度脱水，此时的红细胞数由正常的17×1012/升增加至20×1012/升，脉搏由100次/分增加为130次/分，每次补液按20毫升/千克计算，脉搏及红细胞数就可因补液而稍有改善。
PVC为45%时，判定为中度脱水，红细胞数增至22.5×1012/升，脉搏增至160次/分以上。此时每次补液应按30毫升/千克计算即可缓解。
PVC为50%以上时，判定为重度脱水，红细胞数增至25×1012/升，脉搏增至200次/分以上，每次补液应按40毫升/千克体重计算。
这种计算法可粗略算出对羊的补液量，但无法确定心脏功能的好坏，虽简单易行，却仍感不足。如果要判定心脏功能的好坏，就需要测定中心静脉压，但此法操作复杂，在当前兽医临床上不便采用。
PCV%×50=红细胞（百万/毫米3）
红细胞数（百万/毫米3）×2%=PCV%
PCV%÷0.04=血红蛋白（克/分升）
3.磺胺类与抗生素的应用
为了给羊临床用药提供代谢动力学方面的重要参数，西北农林科技大学药理教研组对8种磺胺类与抗生素药物的代谢进行了研究，现分述如下：
（1）磺胺类：
（2）抗生素：
1）注射抗生素：
2）口服抗生素：成年奶山羊瘤胃中的纤毛虫含60万～100万/毫升，细菌为100亿～150亿/毫升，这些微小生物对纤维素的消化起重要作用，因此，有人建议把纤毛虫计数作为推断瘤胃消化功能是否恢复的一个指标。
既然瘤胃中存在如此多的原虫和微生物，因此，口服抗生素及某些磺胺类，可产生如下不良后果：一是抑制或杀死某些微生物，破坏正常微生物体系，使消化功能下降，奶产量降低，或延误病情；二是某些微生物群落对某种抗生素产生抗药性，使抗生素失去作用。因此，给羊投服抗生素或磺胺时，除了羔羊及某些细菌性胃肠炎外，一般应避免口服。
（3）联合应用抗菌药物问题：联合用药的目的是为了获得协同作用，从而提高抑菌或杀菌效果，更好地控制感染，降低毒性，减少或延长抗药性的产生。但临床实践证明，联合用药并不是对所有病例都能获得所希望的增强效果，甚至少数情况下疗效反有降低。因为联合用药可能发生增强、无关、拮抗等。
在实践中，可以按照抗菌药物对细菌作用性质的不同，将其分为四类：
第一类：繁殖期杀菌剂，如青霉素类、头孢霉素类等。
第二类：静止期杀菌剂，氨基糖苷类如链霉素、庆大霉素、卡那霉素、新霉素和青霉素等。
第三类：速效抑菌剂，如四环素、土霉素、合霉素、氯霉素与大环内酯类抗生素（红霉素、螺旋霉素、麦迪霉素）等。
第四类：慢效抑菌剂，如磺胺类、呋喃类。
在联合应用时，各类之间联合应用后的效果是有不同的。
第一类和第二类：都是杀菌剂，合用有增强作用，例如青霉素与链霉素合用，在链霉素的作用下，细菌合成了无功能的蛋白质，但蛋白质合成并未停止，因此，细菌细胞继续生长而体积增大，这就有利于青霉素阻碍细胞壁黏肽合成，导致细胞壁缺损，胞浆内渗透压增高而使细菌肿大、变形、溶菌而死亡。青霉素破坏细菌胞壁的完整性，也有利于链霉素等进入细胞内而发挥作用。多黏菌素类和青霉素类或氨基糖苷类抗生素合用，也可使疗效增强。
第一类和第三类：合用可降低抗菌效能，如青霉素类与氯霉素或四环素类合用，由于后两类药使蛋白质的合成迅速被抑制，细菌处于静止状态，致使青霉素（繁殖期杀菌剂）干扰细胞壁合成，导致壁缺损的作用不能充分发挥，降低其抗菌效能。
第二类和第三类：合用可获得增强或相加作用，一般不产生拮抗作用。
第三类和第四类：合用一般可获得相加作用，由于都是抑菌剂，一般可获得相加作用。
第四类和第一类：合用一般无重大影响。在治疗流行性脑膜炎时，由于青霉素G透过血脑屏障能力较差，可与易透过的磺胺嘧啶合用而提高疗效。
（4）联合用药的对象：
1）病因未明：危及生命的病因未明的严重感染。
2）严重感染：如金葡萄感染、细菌性心内膜炎、败血症等，估计使用单一药物难于控制者。
3）混合感染：考虑到单一抗菌药不能控制混合感染时，如烧伤污染的复合创伤、腹腔脏器穿孔所引起的腹膜炎等。
4）感染部位为一般抗菌药不易透入者：如结核性脑膜炎、结核杆菌的细胞内感染，可采用链霉素与易透入细胞内的异烟肼合用，以增强疗效。
5）防止抗药性产生：需要长期应用抗菌药而细菌易产生抗药性者，如结核病、革兰氏阴性杆菌所致的肾盂肾炎。
6）抑制水解酶：异唑类与青霉素合用，由于前者可抑制β-内酰胺酶，从而发挥两药的协同抗菌效果。
(5）抗菌药物的临床选择：抗菌药物的选择首先取决于病原体的种类和性质，因此，正确选用抗菌药物必须对致病菌临床正确判断，并配合以病原菌的分离与药敏试验。
4.糖的应用
在羊长期不吃或在其他疾病治疗过程中，兽医人员往往补给大量浓葡萄糖液，或是灌服大量蔗糖或葡萄糖粉，这种方法不一定合适。
（1）口服大量蔗糖：崔中林将60头怀孕奶山羊，随机分成A、B、C3组，每组20只，A组每天喂给白糖250克，分两次拌入饲料中自食；B组每天喂给白糖150克，分两次拌入饲料中自食；C组为对照组。连续3天之后，A组羊只精神沉郁，食欲明显下降，中等程度拉稀，喂至第五天，拉稀加重，停止喂糖。B组羊食欲稍减，有16只羊表现轻度拉稀，至第五天停喂。C组正常。停喂白糖后第二天，拉稀停止，食欲恢复。另选20只怀孕羊（均为预产期前1个月），一次喂给250克白糖，第二天有18只羊拉稀（90%）。
研究报道，蔗糖进入瘤胃后，被微生物发酵，转化成低级脂肪酸，其中主要为乙酸和丁酸。糖在瘤胃中酵解形成大量：乳酸，聚集在瘤胃内的乳酸是：D（-）和L(+)异构体的混合物，D（-）在胃内代谢缓慢，而L(+)乳酸进入血液后，迅速转变成丙酮酸。瘤胃中的过量乳酸及其他酸性物，造成瘤胃酸中毒。瘤胃pH值迅速降低，原虫消失，毒素吸收进入血液引起毒血症，从而出现瘤胃蠕动停滞、腹痛、腹泻、脱水，血液浓稠，心衰或死亡。
由此可见，在治疗中口服蔗糖有害无益，应该引起兽医的重视。如果想让羊体内多产生些葡萄糖，可以供给葡萄糖的前体，如丙酸、甘油等；另外，口服瘤胃素可使丙酸增加，给予糖皮质激素如可的松、皮质醇等，可以加强由氨基酸异生葡萄糖，并可增强某些酶的生成。
（2）静脉注射大量浓葡萄糖液：给奶山羊静脉注射5%葡萄糖，可以被羊体利用。但给予大量10%～50%的浓糖，其结果一是通过肾脏排除，使羊体水分减少，二是引起反刍与前胃运动抑制。
研究报道，反刍动物的血糖比单胃动物低得多，在成年泌乳羊为6.1毫克/升全血(西北农林科技大学测定)，因此可以推断，反刍动物具有一个特殊的趋于低血糖的发育变化，这个变化与饲养计划的改变无关（Swenson，1970）。如果人为地造成高血糖，则羊必然通过机体本身进行调节而导致反刍减少，瘤胃蠕动减弱或废绝，进一步发展为前胃弛缓，这就是静脉注射大量葡萄糖有害无益的道理。
5.盐类泻剂的应用
瘤胃是水的贮存和转运站。瘤胃中的水可被直接吸收进入血液，而血液中的水也可通过瘤胃壁进入瘤胃，这种双相扩散作用与渗透压有关，瘤胃内容物起着人工泵的作用。因此，当瘤胃积食或三四胃阻塞伴发胃有大量液体与食物时，若大量使用盐类泻剂（如硫酸镁、硫酸钠、人工盐等）可造成高渗环境，使机体脱水，特别是在后部不通时，瘤胃被液体充满，起不到下泻作用。因此，在应用盐类泻剂时，应加以足够的水量，使其成为4%～6%的溶液。
若病程过久，可用0.25%普鲁卡因500毫升，加入青霉素40万单位，从右肷窝部行腹腔注射，每天2次，连用2～3天效果较好。