病理学诊断：免疫组化染色可以用于检测组织中的特定蛋白质，帮助医生确定病变的性质和类型。例如，在癌症诊断中，可以通过检测肿瘤细胞中的某些蛋白质来确定肿瘤的类型和分级。神经科学研究：免疫组化染色可以用于研究神经系统中的蛋白质表达情况。例如，在研究阿尔茨海默病时，可以通过检测大脑组织中β-淀粉样蛋
1、载玻片的处理：抗原修复过程中，由于高温、高压、辐射等诸多因素的影响，极易造成脱片。为保证试验的正常进行，可选用我公司提供的ZLI-9001APES、ZLI-9003HistogripTM或ZLI-9005Poly-L-Lysine等几种试剂，对已清洗的载玻片进行处理。具体方法如下：1.1
免疫组化的方法很多，新方法层出不穷，如二步法，要不断更新，与时俱进。虽然这些方法各有其特色，但总的来说，只要应用恰当均可获得较为满意的结果。方法的选择并不是影响免疫组化结果的主要因素。问题在于一个单位应常规地、固定地使用一种方法，不宜交替使用不同的方法或经常更换方法。一旦选定一种方法，应务必使其标准
水溶液也可以做，比如用ATR，用水做背景。但浓度低很可能什么峰也看不到。因为水的吸收太强。浓缩以后应该可以看到，前提是物质有并且与水不同的红外吸收峰具体浓缩到多大的浓度跟你物质本身的性质有关，不同的物质不一样。另外浓缩过程中不可避免的会有一些物质损失
免疫组化除正常的真实的阳性信号外常常会遇到不正常的背景着色，这些非正常的着色称为“杂音”染色。“杂音”染色种类繁多，产生的原因也多种多样，为了便于说明，笔者将其归纳为下面几种。1、全片着色全片着色是指整个切片全都染上了颜色，着色的强度可深可浅，总之，分不清那些组织是阳性那些组织是阴性。出现这种现象的
高内涵细胞成像可以同时拍摄明场和荧光。高内涵细胞成像仪是一种用于生物学、药学、中医学与中药学领域的分析仪器
根据标记物的不同分为免疫荧光法，免疫酶标法，亲和组织化学法，后者是以一种物质对某种组织成分具有高度亲合力为基础的检测方法。这种方法敏感性更高，有利于微量抗原（抗体）在细胞或亚细胞水平的定位，其中生物素—抗生物素染色法最常用。
免疫组化染色方法已不是什么很难的问题，操作步骤简单也易掌握，但要染好免疫组化，其中方法的技巧将是每位操作者在实际工作中不断摸索和探讨的事，但最基本的应从以下方面加以注意：（1）去除内源酶及内源性生物素一般我们进行免疫组化标记的都是一些生物体组织，其中自身含有一定量的内源酶和内源性生物素，而免疫组
（一）实验目的：学习细菌的简单染色法和革兰氏染色法。（二）实验原理：用于生物染色的染料主要有碱性染料、酸性染料和中性染料三大类。碱性染料的离子带正电荷，能和带负电荷的物质结合。因细菌蛋白质等电点较低，当它生长于中性、碱性或弱酸性的溶液中时常带负电荷，所以通常采用碱性染料（如美蓝、结晶紫、碱性复红或孔
（一）实验目的：学习细菌的简单染色法和革兰氏染色法。（二）实验原理：用于生物染色的染料主要有碱性染料、酸性染料和中性染料三大类。碱性染料的离子带正电荷，能和带负电荷的物质结合。因细菌蛋白质等电点较低，当它生长于中性、碱性或弱酸性的溶液中时常带负电荷，所以通常采用碱性染料（如美蓝、结晶紫、碱性复红或
如果你的片子和操作过程都是一样，而一组没信号、另一组却有信号，那出现差异的原因就应该是一抗的反应过程（不知你的显色过程是怎样的）；而你要是能确定看到的结果不是基因表达的实际情况，即你所说的非特异染色，那就应该是抗体的原因，单就非特异染色而言，可能是你的抗体稀释度不够，可以尝试倍增稀释比，最好是查询使
（1）、染色质和染色体的主要成分都是DNA和蛋白质，它们之间的不同，不过是同一物质在细胞分裂间期和分裂期的不同形态表现而已。染色质出现于间期，呈丝状。它们在核内的螺旋程度不一，螺旋紧密的部分，染色较深，有的螺旋松疏染色较浅，染色质在光镜下呈现颗粒状，不均匀地分布于细胞核中。细胞分裂时染色质细
tem拍照时按照一条直线走，拍出这个直线上所有的粒子的图片，然后用软件量出大小，统计做图。或者是随机地拍，但是不要掺入个人的主观因素，最后统计做图。曾经有一个做tem的大牛人来做报告时说他为了统计粒子大小分布，统计了一万多张照片，看一看人家的严谨态度，相比之下，很多文献就统计了不到一千个粒子，汗啊。
离子阱（Iontrap），大致分为三维离子阱（3DIonTrap）、线性离子阱（LinearIonTrap）、轨道离子阱（Orbitrap）三种。除轨道离子阱外，离子阱使用电磁场将离子限定在特定的
石蜡制片法是将材料经固定、脱水、透明、浸蜡后包埋在石蜡里面进行切片的方法。此法适用范围，制片手段完备，能将材料切成极薄的片子（可切至2-8微米左右），并能制成连续的片子，这是其它制片法难以达到的，因此在光学显微镜的制片技术上它是最常用的一种方法。除了一些经不住石蜡切片法中所应用的各种药剂处理的材料
最好是24小时。实验前将保存在-20℃的基质胶转移至4℃冰箱融化过夜，使用前用无血清培养基按培养基：基质胶=2:1的比例稀释；接种前将24孔板和Transwell小室用1×PBS浸泡5min湿润小室。用胰蛋白酶消化细胞后，用无血清培养液洗涤细胞，用含有1%FBS的培养基重悬细胞计数。培养24h后（侵
从定义来看：荧光原位杂交方法是一种物理图谱绘制方法，使用荧光素标记探针，以检测探针和分裂中期的染色体或分裂间期的染色质的杂交。染色体核型分析是将待测细胞的染色体依照该生物固有的染色体形态结构特征，按照一定的规定，人为的对其进行配对、编号和分组，并进行形态分析的过程。从运用场景来看：
1．石蜡切片脱蜡至水：（石蜡切片染色前应置60℃1小时）。①二甲苯、II，各10分钟。②梯度酒精：100%，2分钟95%，2分钟80%，2分钟70%2分钟。③蒸馏水洗：5分钟，2次（置于摇床）。2．过氧化氢封闭内源性过氧化物酶：3%H2O2，室温10分
1、载玻片的处理：抗原修复过程中,由于高温、高压、辐射等诸多因素的影响，极易造成脱片。这里选用ZLI-9001APES、ZLI-9003HistogripTM或ZLI-9005Poly-L-Lysine等几种试剂，对已清洗的载玻片进行处理。具体方法如下：（1）APES：现用现配。将洗净的玻片
如果只是区别出神经元，用尼氏染色就可以了，正常的神经细胞都含有尼氏体，它们主要分布于神经细胞的浆中，形状有大有小，如三角形，有的为椭圆形。
实验概要本实验介绍了细胞爬片的免疫组化染色鉴定操作流程及注意事项。主要试剂PBS，0.5%TritonX-100(DPBS配)，3%H2O2，封闭血清(5%正常二抗血清DPBS液)，一抗(PBS配，滴度1：200，湿盒)，二抗工作液(湿盒)，C液(湿盒)，DAB显色液，苏木素，树胶主要设备20m
免疫组化染色具体操作步骤介绍（以美国ZYMED公司SP试剂盒为例）1、石蜡切片脱蜡至水。2、3%H2O2室温孵育5~10分钟，以消除内源性过氧化物酶的活性。4、蒸馏水冲洗，PBS浸泡5分钟，（如需采用抗原修复，可在此步后进行）。5、5~10%正常山羊血
免疫组化染色具体操作步骤介绍（以美国ZYMED公司SP试剂盒为例）1、石蜡切片脱蜡至水。2、3%H2O2室温孵育5~10分钟，以消除内源性过氧化物酶的活性。4、蒸馏水冲洗，PBS浸泡5分钟，（如需采用抗原修复，可在此步后进行）。5、5~10%正
做紫外的时候没有问题，拿dmso做参比就是了。做hplc的时候有点问题就是，dmso与流动相的相溶性问题，相容性不好，出的峰肯定很丑。